T/GDP 广东省农药协会团体标准 T/GDP007—2020 太平洋细须螨的检验及鉴定方法 DetectionandIdentificationofTenuipalpuspacificusBaker 2020-10-20发布 2020-10-27实施 广东省农药协会 发布ICS65.020 B16 全国团体标准信息平台 T/GDP007—2020 1前  言 本标准按照GB/T1.1-2009《标准化工作导则第1部分：标准的结构和编写》给出的规则起草。 本标准由广东省农药协会提出。 本标准起草单位：广州海关技术中心、仲恺农业工程学院、广州禾立田生物科技有限公司、广州白 云机场海关、惠州海关技术中心、韶关禾立田农场有限公司 本标准主要起草人：林莉、韩群鑫、邵振芳、王泽清、章柱、于飞、颜素娟、梁远成、陈伟 本标准为首次发布。 全国团体标准信息平台 T/GDP007—2020 2太平洋细须螨的检验及鉴定方法 1范围 本标准明确了太平洋细须螨的检测、标本保存和室内鉴定等方法。 本标准适用于兰科植物种植过程中的太平洋细须螨的检验和鉴定。 2术语 下列术语和定义适用于本标准： 2.1 颚体gnathosoma 足I基节前的体段称为颚体。颚体由颚基gnathobase、1对螯肢chelicera和1对须肢palpus组成。 2.2 足leg 足一般分为7节：基节coxa、转节trochanter、股节femur、膝节genu、胫节tibia、跗节tarsus和前跗 节pretarsus。 前跗节结构复杂，其末端的爪claw、爪间突empodium和爪垫pulvillus构成步行器ambulacralorgan， 具有步行功能，步行器基部与前跗节骨片和肌腱相连。细须螨科Tenuipalpidae的爪间突垫状，着生有梳 状黏毛。 2.3 躯体idiosoma 位于颚体的后方，成螨着生4对足，着生足的部分为足体podosoma。前足体、后足体和末体合称 为躯体。 2.4 前足体propodosoma 足I、II着生体段称为前足体。 2.5 后足体metapodosoma 足Ⅲ、Ⅳ着生体段称为后足体。 2.6 末体opisthosoma 全国团体标准信息平台 T/GDP007—2020 3足Ⅳ以后的体段称为末体。 2.7 前半体proterosoma 颚体和前足体合称为前半体。 2.8 后半体hysterosoma 后足体和末体合称为后半体。 2.9 感毛chemosensoryseta 指能感受化学物质的毛。例如感棒、荆毛和芥毛等。细须螨科足I和足II跗节上各有1根~2根感棒。 感棒solenidion是不含光毛质的化感毛，着生于附肢上，光滑，一般呈棍棒状，端部钝圆，内壁有 轮状细纹。 2.10 喙板rostralshield 细须螨科有些种类的前足体左右对称，突起向前方突出，覆盖颚体基部，此种前足体的突起称为喙 板。 2.11 拇爪复合体thumbclawcomplex 有些螨类的须肢胫节末端具有大的爪状毛，而跗节离开原位，移至胫节腹侧，即须肢的跗节与胫节 的爪形成拇指（跗节）和食指（胫节爪）相对之势，这种须肢的构造成为拇爪复合体，拇爪复合体有把 握事物的作用。叶满科、长须螨科和肉食螨科等螨类具有拇爪复合体，而细须螨的螨类则无此复合体。 3有害生物信息 3.1分类地位 学名TenuipalpuspacificusBaker 英文名phalaenopsismite 隶属蛛形纲Arachinida蜱螨亚纲Acari细须螨科Tenuipalpidae。 3.2传播 各螨态可随被害叶片作远距离传播；细须螨本身可作小范围移动，极易附在昆虫或人身上作近距离 的扩散传播。太平洋细须螨的生物学特性和繁殖特性参见附录A。 4仪器、用具和试剂 4.1仪器和用具 全国团体标准信息平台 T/GDP007—2020 4放大镜、解剖针、镊子、挑针、环形针、指形管、小培养皿、描笔、载玻片、盖玻片、体视显微镜、 生物显微镜（具油镜）、电热板、干燥箱、贝氏漏斗（Berlesefunnel）、标签。 4.2试剂 奥氏液（Oudemans’fluid）配方：70%酒精87ml、冰醋酸8ml、甘油5ml； 内氏液（Nesbitt’sfluid）配方：水合氯醛40g、浓盐酸2.5ml、蒸馏水25ml； 霍氏液（Hoyer’smedium）配方：水合氯醛100g、阿拉伯胶15g、甘油10ml、蒸馏水25ml； 乳酸、中性树胶。 5实验室检验 5.1检验方法 5.1.1直接采集 在放大镜或体视显微镜下重点检查严重失绿变黄，呈现灰色密集小斑点的叶片，检查叶片背面、托 叶鞘和花梗，肉质假鳞茎的种类重点检查茎干和花梗，借助挑针仔细检查，若有橘黄色或橘红色囊状物 活动，需要调整显微镜放大倍数检查，确认是螨类后，用挑针或描笔挑入盛有奥氏液的指形管中，同时 放入采集标签。采集标本时，作好记录，内容包括采集时间、地点、寄主植物、被害症状、为害程度、 体色、斑点形状、数目以及在植物上的栖息部位等。 采集和挑取标本时要注意雌雄标本兼顾。 5.1.2分离采集 取待检植物活体、脱落的黄叶等放置于贝氏漏斗网上，漏斗下放置承接器皿，器皿内放少量清水， 以防螨逃逸或干死。用40W灯泡为热源，烘烤干燥24h，然后将承接器皿放在体视显微镜下检查，发现 螨类后，挑入盛有奥氏液的指形管，并做好标签和记录。 5.2标本制作 5.2.1清洗 在体视显微镜下，用环形针将螨移入盛有内氏液的小培养皿中，浸泡24h。 5.2.2临时性玻片标本制作 使用乳酸作浮载剂制作临时玻片，加微温使螨体透明。根据鉴定需要，轻微推动盖片，使螨体标本 滚动至合适部位，便于在镜下观察。 5.2.3永久性玻片标本制作 在载玻片上滴1至2滴的霍氏液。从内氏液中挑出根螨，触碰滤纸去除多余液体，然后放入霍氏液， 整姿后，盖上盖玻片，放在60W白炽灯或500W电热板上加热至气泡排出，用油性笔在载玻片下方标出 螨体位置，并贴上采集标签。在低倍显微镜下检查、调整螨体位置，用40x以下物镜进行初步鉴定。 将玻片标本放在50℃左右干燥箱中干燥，1周后即可用于油镜（100x）观察。 5.2.4标签 全国团体标准信息平台 T/GDP007—2020 5载玻片右侧贴采集标签，注明寄主植物、采集地点、采集时间和采集人。左侧贴定名标签，注明该 种学名、中名、鉴定人和鉴定日期。 中名： 寄主： 学名： 采集地点： 鉴定人： 采集时间： 鉴定日期： 采集人： 玻片标本标签标注方法图示 5.3样品保存 5.3.1浸泡标本 为害状样品以及根螨应妥善保存。放入盛有奥氏液或70%~75%酒精的指形管中制成浸渍标本，并 插入标签；再将指形管放入盛有70%~75%酒精的广口瓶中，密封保存。 5.3.2玻片标本 干燥约3个月后，在盖玻片周围封中性树胶，继续干燥1日~2日即可在常温下保存，也可置于干 燥器中长期保存。 6鉴定特征 6.1细须螨科Tenuipalpidae的主要鉴定特征 成螨体长200um~400um，一般扁平，多为红色。须肢由1节~5节构成，同一属中不同种类的节 数亦不同，无爪，无拇爪复合体。有些种类的前足体左右对称，突起向前方突出，覆盖颚体基部。躯体 背面有龟甲状或网状花纹，体壁表面的形状因种类而不同。躯体背毛及腹毛的排列也为分类上的主要特 征。足粗短，多有横皱。I、II跗节近末端有短棒状或纺锤状的感器1个~2个。足上的爪和爪间突多有 黏毛。 6.2太平洋细须螨TenuipalpuspacificusBaker的主要鉴定特征 6.2.1卵 橘红色，椭圆形。孵化时幼螨前半体先破壳而出，之后幼螨的第Ⅰ足和第Ⅱ足用力将躯体从卵壳中脱 出。卵壳为白色。 6.2.2幼螨 橘红色，身体柔软，三对足，末体中央有一脊状突起，不活泼。在脱皮进入第一若螨期之前有一静 息期，静息期间不动不吃，三对足伸直，躯体圆润。 6.2.3第一若螨 橘红色，四对足，前足体两侧，后足体和末体中央开始出现黑斑，斑块色淡，体型较幼螨大。在脱 皮进入第二若螨期之前有一静息期。 全国团体标准信息平台 T/GDP007—2020 66.2.4第二若螨 似第一若螨，体型稍大，斑块颜色深一些。在进入成螨期之前有一静息期。 6.2.5雌成螨 ——雌螨刚蜕皮时似第二若螨，之后躯体颜色变深，硬化，整个躯体中间有一脊状突起，末体钝圆。 ——体长312um~354um，宽约190um； ——背面有不规则纵条纹；背毛13对，前半体背毛3对，第3对背毛是第1对背毛长度的3倍； ——后半体背板具不规则的横纹，背侧毛5对，第5对背侧毛细长，鞭毛状，长度稍短于末体长； ——末体两侧有小孔1对； ——足转节I有2根刚毛，转节II有3根刚毛，转节Ⅲ和转节Ⅳ具1根刚毛，膝节Ⅰ和膝节Ⅱ具2根 刚毛，膝节Ⅲ具1根刚毛，膝节Ⅳ刚毛缺如。 ——雌成螨特征参见附录B。 6.2.6雄成螨 体较雌成螨小，体橘红色，较柔软，躯体较扁平，末体近方形，两侧几近平行，末体几乎无黑斑。 体长269um~283um，宽约152um，末体收窄，其余特征与雌成虫相似。雄成螨特征参见附录B。 7结果判定 以成螨的形态特征为依据。符合6.2.5和6.2.6上述形态的可鉴定为太平洋细须螨。卵、幼螨和若螨的 形态特征可作为参考。 全国团体标准信息平台 T/GDP007—2020 7附录A （资料性附录） 太平洋细须螨TenuipalpuspacificusBaker其他信息 A.1地理分布 泰国、菲律宾、印度尼西亚、英国、荷兰、德国、美国、巴拿马、南非、澳大利亚、波兰。 A.2寄主植物 兰科Orchidaceae：指甲