说明:收录全网最新的团体标准 提供单次或批量下载
ICS 65.120 B 46 吉 DB22 林 省 地 方 标 准 DB 22/T 2049—2014 动物源性饲料中鸭源性成分测定 PCR 方法 Determination of duck derived materials in animal-originated feedstuffs PCR method 2014 - 02 - 28 发布 2014 - 04 - 30 实施 吉 林省质 量 技 术监 督 局 发 布 DB22/T 2049—2014 前 言 本标准按照GB/T 1.1-2009和GB/T 20001.4-2001给出的规则起草。 本标准由吉林省质量技术监督局提出并归口。 本标准主要起草单位:吉林省产品质量监督检验院、国家农业深加工产品质量监督检验中心、中华 人民共和国吉林出入境检验检疫局。 本标准主要起草人:史艳宇、刘金华、邴炜、王莹、周亮、吕航、郎乐、张庆波、宫国强。 I DB22/T 2049—2014 动物源性饲料中鸭源性成分测定 PCR 方法 1 范围 本标准规定了动物源性饲料中鸭源性成分的PCR检测方法,该方法的检出限为0.1%。 本标准适用于动物源性饲料中鸭源性成分的定性检测。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文 件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 GB/T 27403 实验室质量控制规范 食品分子生物学检测 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 鸭源性成分 duck-derived materials 鸭种属特异性 DNA 片段。 4 原理 对样品进行 DNA 提取,通过 PCR 扩增,检测鸭特异性基因片段。 5 试剂和材料 除特别说明以外,所有试剂均为分析纯,水为按照GB/T 6682规定的一级水。所有试剂均用无DNA 酶污染的容器分装。 5.1 鸭源性成分检测用引物(对)序列为: a) 上游引物:5’- CATCTATCCTGCTAGCCGCC -3’ b) 下游引物:5’- GGCTTGAGTGGAAGAATGCC -3’ 5.2 Taq DNA 聚合酶。 5.3 dNTP:dATP(deoxyadenosine triphosphate,脱氧腺苷三磷酸)、dGTP(deoxyguanosina triphosphate, 脱氧鸟苷三磷酸)、dCTP(deoxycytidine triphosphate,脱氧胞苷三磷酸)、dTTP(deoxythymidine triphosphate,脱氧胸苷三磷酸)。 5.4 动物基因组 DNA 提取纯化试剂盒。 5.5 RNase A 酶:冻干品,不含 DNase。 5.6 蛋白酶 K:冻干品。 5.7 三羟甲基氨基甲烷(Tris)。 5.8 Tris 饱和苯酚。 1 DB22/T 2049—2014 5.9 三水合乙酸钠、氯化钠。 5.10 十六烷基三甲基溴化铵(cetyltrithylammonium bromide,CTAB)。 5.11 乙二胺四乙酸二钠盐(EDTA-Na2·2H2O)。 5.12 75%乙醇、异丙醇、三氯甲烷、异戊醇、正己烷等有机试剂。 5.13 10×PCR 缓冲液:含 200 mmol/L Tris-HCl(pH8.4),200 mmol/L 氯化钾(KCl),15 mmol/L 氯 化镁(MgCl2 )。 5.14 分子量标记:100 bp~3 000 bp DNA Marker。 5.15 酶切缓冲液:含 10 mmol/L Tris-HCl(pH7.5),10 mmol/L MgCl2,50 mmol/L NaCl,0.1 mg/mL BSA。 5.16 RNase A 酶溶液:用高压灭菌的去离子水溶解 RNase A 酶为 10 mg/mL 的溶液,分装后于-20 ℃ 保存,避免反复冻融。 5.17 蛋白酶 K 溶液:用高压灭菌的去离子水溶解蛋白酶 K 为 20 mg/mL 的溶液,分装后于-20 ℃保存, 避免反复冻融。 5.18 乙酸钠溶液,3 mol/L:在 80 mL 水中,加入 40.81 g 三水合乙酸钠,溶解后用冰乙酸调节 pH 值 到 5.2,用水定容到 100 mL,分装后高压灭菌。 5.19 Tris-HCl,1 mol/L,pH8.0:在 800 mL 去离子水中溶解 121.1 g Tris,冷却至室温后用浓盐酸调节 溶液的 pH 值至 8.0,加水定容至 1 L,分装后高压灭菌。 5.20 EDTA,0.5 mol/L,pH8.0:称取 186.1 g EDTA-Na2·2H2O,加入 700 mL 水中,在磁力搅拌器上 剧烈搅拌,用 10 mol/L 氢氧化钠调 pH 值至 8.0,用水定容到 1 L,分装后高压灭菌。 5.21 CTAB 提取缓冲液 I:在 800 mL 去离子水中加入 46.75 g 氯化钠,溶解后加入 1 mol/L Tris-HCl (pH8.0)50 mL,0.5 mol/L EDTA(pH8.0)20 mL,在磁力搅拌器上剧烈搅拌,用 10 mol/L 氢氧化钠 调节溶液的 pH 值至 8.0,用水定容至 1 L,分装后高压灭菌。 5.22 CTAB 提取缓冲液 II:在 800 mL 去离子水中加入 46.75 g 氯化钠,20 g CTAB,完全溶解后加入 1 mol/L Tris-HCl (pH8.0)50 mL,0.5 mol/L EDTA(pH8.0)20 mL,用水定容至 1 L,分装后高压灭 菌。 5.23 Tris 饱和苯酚和三氯甲烷混合液,V (Tris 饱和苯酚)+V (三氯甲烷)=1+1。 5.24 三氯甲烷和异戊醇混合液,V (三氯甲烷)+V (异戊醇)=24+1。 5.25 TE 缓冲液(pH8.0):在 800 mL 水中,依次加入 10 mL 的 1 mol/L Tris-HCl(pH8.0)和 2 mL 的 0.5 mol/L EDTA(pH8.0),用水定容到 1 L,分装后高压灭菌。 5.26 电泳缓冲液:Tris 54 g,硼酸 27.5 g,0.5 mol/L EDTA 溶液(pH8.0)20 mL,加蒸馏水至 1 000 mL; 使用时 10 倍稀释。 5.27 溴化乙锭贮存液:用水配制成 10 mg/mL。 警告—溴化乙锭(EB)有致癌作用,使用时要戴一次性手套。 5.28 加样缓冲液:称取溴酚蓝 250 mg,加水 10 mL,在室温下过夜溶解;再称取二甲腈蓝 250 mg, 用 10 mL 水溶解;称取蔗糖 50 g,用 30 mL 水溶解,合并三种溶液,用水定容至 100 mL,在 4 ℃保存。 6 仪器和设备 6.1 6.2 6.3 6.4 6.5 2 PCR 仪。 生物安全柜。 离心机:转速≥12 000 r/min。 核酸蛋白分析仪或紫外分光光度计。 电泳仪。 DB22/T 2049—2014 6.6 6.7 6.8 6.9 6.10 6.11 7 凝胶成像分析系统。 恒温水浴锅。 高压灭菌器。 pH 计。 移液器:0.5 μL~10 μL、10 μL~100 μL、20 μL~200 μL、200 μL~1 000 μL。 振荡器。 检测步骤 7.1 试样的预处理 50 g固体样品粉碎,颗粒大小在0.125 mm以下。 7.2 DNA 提取和纯化 7.2.1 CTAB 法制备非油脂类饲料模板 DNA 称取100 mg经预处理的试样于1.5 mL离心管中,加入300 μL冰上预冷的CTAB提取缓冲液I,加入500 μL于65 ℃预热的CTAB提取缓冲液II,混匀,65 ℃保温30 min~90 min,期间不时轻缓颠倒混匀;加入 5 μL~25 μL蛋白酶K溶液,上下倒转混匀,37 ℃水浴中保温1 h,中途每隔10 min左右倒转混合数次;待 冷却至室温后加入5 μL RNase A 溶液(10 mg/mL),室温下放置30 min;室温12 000r/min 离心10 min, 取上清液,于另一干净的2 mL离心管中,分别用等体积Tris饱和苯酚、Tris饱和苯酚+三氯甲烷(1+1) 和三氯甲烷+异戊醇(24+1)抽提三次,12 000r/min 离心10 min;将上清液转移至干净的2 mL离心管中, 加入等体积异丙醇及1/10体积的3 mol/L乙酸钠溶液,轻缓颠倒混匀;12 000r/min 离心10 min,弃上清 液,用500 μL 75%乙醇洗涤沉淀两次;除去残留的乙醇,干燥后,DNA沉淀溶解于100 μL TE缓冲液(预 先加热至65 ℃有利于溶解DNA)中,-20 ℃保存备用。 7.2.2 CTAB 法制备油脂类饲料模板 DNA 取油脂饲料适量(液态油取30 mL、磷脂类和固态油脂取5 g)放入250 mL三角瓶中,加入25 mL正 己烷,于磁力搅拌器上不断振荡混合2 h后,加入25 mLCTAB提取缓冲液II,继续于磁力搅拌器上振荡 混合2 h;将溶液转入100 mL离心管中,于8 000 r/min离心10 min,使有机相和水相分离,取下层水相, 加入与下层水相溶液等体积的异丙醇及水相溶液1/10体积的3 mol/L乙酸钠溶液,轻缓颠倒混匀,室温放 置10 min;12 000r/min 离心10min,弃上清液,待沉淀干燥后用200 μL TE缓冲液溶解沉淀,加入200 μL Tris饱和苯酚+三氯甲烷(1+1),轻缓颠倒混匀溶液;12 000r/min 离心10min,取上清液,加入与上清 液等体积三氯甲烷+异戊醇(24+1),轻缓颠倒混匀,12 000r/min 离心2 min至分层;将上清液转移至 干净的离心管中,加入与溶液等体积的异丙醇及溶液1/10体积的3 mol/L乙酸钠溶液,轻缓颠倒混匀;室 温放置10 min后,12 000r/min 离心10 min,弃上清液后,依次加入800 μL体积分数为75%的乙醇和100 μL 体积分数为75%的乙醇洗涤沉淀;12 000r/min 离心5 min,除乙醇溶液;待沉淀干燥后,DNA沉淀溶解 于100 μL TE缓冲液(预先加热至65 ℃有利于溶解DNA)中,-20 ℃保存备用。 7.2.3 试剂盒法 采用商品化的动物基因组DNA提取试剂盒,按照试剂盒使用说明提取DNA。 注:DNA提取和纯化过程应用水作为核酸提取空白对照。 7.3 DNA 浓度和纯度的测定 3 DB22/T 2049—2014 取10 μ L DNA溶液加蒸馏水稀释至1 mL,使

pdf文档 DB22-T 2049-2014 动物源性饲料中鸭源性成分测定 PCR方法 吉林省

文档预览
中文文档 10 页 50 下载 1000 浏览 0 评论 0 收藏 3.0分
温馨提示:本文档共10页,可预览 3 页,如浏览全部内容或当前文档出现乱码,可开通会员下载原始文档
DB22-T 2049-2014 动物源性饲料中鸭源性成分测定 PCR方法 吉林省 第 1 页 DB22-T 2049-2014 动物源性饲料中鸭源性成分测定 PCR方法 吉林省 第 2 页 DB22-T 2049-2014 动物源性饲料中鸭源性成分测定 PCR方法 吉林省 第 3 页
下载文档到电脑,方便使用
本文档由 SC 于 2022-10-26 12:58:54上传分享
站内资源均来自网友分享或网络收集整理,若无意中侵犯到您的权利,敬请联系我们微信(点击查看客服),我们将及时删除相关资源。