ICS07.080 CCSA40 中华人民共和国国家标准 GB/T46389—2025 肝素酶活力的测定 Determinationoftheactivityofheparinlyase 2025-10-05发布 2026-05-01实施 国家市场监督管理总局 国家标准化管理委员会发布前 言 本文件按照GB/T1.1—2020《标准化工作导则 第1部分:标准化文件的结构和起草规则》的规定 起草。 请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文的发布机构不承担识别专利的责任。 本文件由全国生化检测标准化技术委员会(SAC/TC387)提出并归口。 本文件起草单位:清华大学、河北省食品检验研究院、中国测试技术研究院、清华大学深圳国际研究 生院、苏州世谱检测技术有限公司、清华大学北京清华长庚医院、苏州大学、深圳市第二人民医院、中国 生化制药工业协会、中国生物发酵产业协会、中国计量测试学会。 本文件主要起草人:王怡、邢新会、张岩、周李华、张翀、张微微、苏楠、卢剑、蒋绚、顾大勇、王旭、 李卫峰、张真庆、徐冰、杨扬仲夫、胡文言、周斌、王晋、王洁。 ⅠGB/T46389—2025 肝素酶活力的测定 1 范围 本文件描述了测定肝素酶活力的分光光度法。 本文件适用于生化试剂肝素酶Ⅰ、肝素酶Ⅱ、肝素酶Ⅲ活力的测定。 2 规范性引用文件 下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中,注日期的引用文 件,仅该日期对应的版本适用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于 本文件。 GB/T6682 分析实验室用水规格和试验方法 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 肝素酶活力单位 heparinlyaseactivityunit 1000μL底物溶液(5.2.2、5.2.3、5.2.4)在30℃、pH7.0的条件下,每分钟酶解产生1μmol4,5-不 饱和糖醛酸所需的酶量。 注:酶活力单位以IU表示。1IU=1.667×10-8mol/s。 4 原理 肝素酶催化底物肝素钠或硫酸乙酰肝素裂解,会生成裂解产物4,5-不饱和糖醛酸。4,5-不饱和糖 醛酸在波长232nm具有特征吸收峰。通过测定232nm处的吸光度变化,结合4,5-不饱和糖醛酸在 232nm的摩尔消光系数,计算酶活力。 5 试剂和材料 除非另有说明,本方法所用试剂均为分析纯,水为GB/T6682规定的二级水。 5.1 试剂 5.1.1 肝素钠(CAS号9041-08-1):纯度≥99%,或经国家认证并授予证书的标准物质/标准样品。 5.1.2 硫酸乙酰肝素(CAS号9050-30-0):纯度≥99%,或经国家认证并授予证书的标准物质/标准 样品。 5.1.3 盐酸(HCl)。 5.1.4 三羟基甲基氨基甲烷(Tris)。 5.1.5 氯化钙(CaCl2)。 1GB/T46389—2025 5.1.6 氯化钠(NaCl)。 5.2 试剂配制 5.2.1 盐酸溶液(6mol/L) 准确量取盐酸(5.1.3)50mL,置于100mL容量瓶中,加水稀释定容至刻度,摇匀。 5.2.2 肝素酶Ⅰ反应底物溶液(肝素钠8.3g/L,CaCl21.2mmol/L,NaCl200mmol/L) 准确称取Tris(5.1.4)0.121g、CaCl2(5.1.5)0.0067g、NaCl(5.1.6)0.584g、肝素钠(5.1.1) 0.415g,用水溶解并转移至50mL容量瓶中,用盐酸溶液(5.2.1)调节pH至7.0,用水稀释定容至刻 度,混匀。 5.2.3 肝素酶Ⅱ反应底物溶液(肝素钠8.3g/L,CaCl21.2mmol/L,NaCl100mmol/L) 准确称取Tris(5.1.4)0.121g、CaCl2(5.1.5)0.0067g、NaCl(5.1.6)0.292g、肝素钠(5.1.1) 0.415g,用水溶解并转移至50mL容量瓶中,用盐酸溶液(5.2.1)调节pH至7.0,用水稀释定容至刻 度,混匀。 5.2.4 肝素酶Ⅲ反应底物溶液(硫酸乙酰肝素16.7g/L,CaCl21.2mmol/L,NaCl50mmol/L) 准确称取Tris(5.1.4)0.121g、CaCl2(5.1.5)0.0067g、NaCl(5.1.6)0.146g、硫酸乙酰肝素(5.1.2) 0.835g,用水溶解并转移至50mL容量瓶中,用盐酸溶液(5.2.1)调节pH至7.0,用水稀释定容至刻 度,混匀。 6 仪器和设备 6.1 紫外-可见分光光度计:带控温比色皿槽,波长精度1nm,吸光度分辨力0.001。 6.2 分析天平:分度值分别为1mg和0.1mg。 6.3 pH计:精度0.01。 6.4 磁力搅拌器。 6.5 石英比色皿:具盖,1cm。 6.6 容量瓶:50mL、100mL。 6.7 烧杯:50mL、1000mL。 6.8 量筒:50mL。 6.9 移液器:10μL、100μL、1000μL。 7 试验步骤 7.1 试样制备 按照样品标称酶活力,移取肝素酶液体样品或称取肝素酶固体样品(精确至0.0001g)适量,用水 溶解并稀释至1.5IU/mL~9.0IU/mL,待测。 7.2 测定 准确移取1000μL反应底物溶液于石英比色皿(6.5)中,置于分光光度计的温控比色皿槽内,待温 度稳定于30℃±1℃后,迅速加入10μL待测液,加盖颠倒混匀后立即放入分光光度计,在232nm扫 2GB/T46389—2025 描20min,保存吸光度曲线。 8 数据处理 8.1 斜率 选取第一个曲线平滑、线性关系显著(R2>0.99)的60s区段,通过线性回归方程按公式(1)计算 斜率: k=A1-A0 t×60……………………(1) 式中: k ———吸光度曲线斜率,以吸光度每分表示; A1———选取区段的最终吸光度值; A0———选取区段的初始吸光度值; t———反应时间,单位为秒(s)。 计算结果保留三位有效数字。 8.2 酶活力 8.2.1 液体样品 试样中肝素酶活力按公式(2)计算: X1=(V1+V2)×k×D ε×V2……………………(2) 式中: X1———酶活力,单位为酶活力单位每毫升(IU/mL); V1———反应底物溶液体积,单位为微升(μL); V2———待测液体积,单位为微升(μL); k———吸光度曲线斜率,以吸光度每分表示; D———稀释倍数; ε———232nm4,5-不饱和糖醛酸的摩尔消光系数,3.8mmol-1cm-1。 计算结果保留三位有效数字。 8.2.2 固体样品 试样中肝素酶活力按公式(3)计算: X2=(V3+V4)×k ε×V4×V0 m……………………(3) 式中: X2———酶活力,单位为酶活力单位每克(IU/g); V3———反应底物溶液体积,单位为微升(μL); V4———待测液体积,单位为微升(μL); k———吸光度曲线斜率,以吸光度每分表示; ε———232nm4,5-不饱和糖醛酸的摩尔消光系数,3.8mmol-1cm-1; V0———待测液定容体积,单位为毫升(mL); m———样品质量,单位为克(g)。 3GB/T46389—2025 计算结果保留三位有效数字。 9 精密度 在重复性条件下,获得的两次独立测定结果的绝对差值不应超过算术平均值的10%。 4GB/T46389—2025