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书书书犐 犆 犛7 1.0 4 0.4 0犅4 0 中华人民共和国出入境检验检疫行业标准 犛 犖/犜5 1 1 8—2 0 1 9 进出口食用动物 、饲料中三聚氰胺残留测定液相色谱 质谱/质谱法 犇 犲 狋 犲 狉 犿 犻 狀 犪 狋 犻 狅 狀狅 犳犿 犲 犾 犪 犿 犻 狀 犲狉 犲 狊 犻 犱 狌 犲 狊 犻 狀犾 犻 狏 犲犪 狀 犻 犿 犪 犾犪 狀 犱犳 犲 犲 犱犳 狅 狉 犻 犿 狆狅 狉 狋犪 狀 犱犲 狓狆狅 狉 狋—犔 犆  犕 犛/犕 犛犿 犲 狋 犺 狅 犱 2 0 1 90 90 3发布 2 0 2 00 30 1实施 中华人民共和国海关总署 发 布 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.书书书前  言   本标准按照 G B/T1. 1—2 0 0 9给出的规则起草 。请注意本文件的某些内容可能涉及专利 ,本文件的发布机构不承担识别这些专利的责任 。本标准由中华人民共和国海关总署提出并归口 。本标准起草单位 :中华人民共和国重庆海关 、中华人民共和国南京海关 。本标准主要起草人 :夏明星、李光满、陈宗祥、王凯民、吴杰、唐柏彬、王昱、胡硕、李应国。 Ⅰ犛 犖/犜5 1 1 8—2 0 1 9 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.进出口食用动物 、饲料中三聚氰胺残留测定液相色谱 质谱/质谱法 1 范围 本标准规定了进出口食用动物 、饲料中三聚氰胺残留量液相色谱 质谱/质谱检测方法 。本标准适用于进出口食用动物 (如猪、牛、羊、兔、鸡、鸭)血液、尿液以及动物饲料中三聚氰胺的测定和确证。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的 。凡是注日期的引用文件 ,仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件 ,其最新版本 (包括所有的修改单 )适用于本文件 。 G B/T6 6 8 2 分析实验室用水规格和试验方法 G B/T1 4 6 9 9. 1  饲料 采样 G B/T2 0 1 9 5  动物饲料  试样的制备 3 方法提要 试样经酸性甲醇水溶液超声提取后 ,经混合阳离子固相萃取柱净化 ,液相色谱 质谱/质谱法检测和确证,内标法定量 。 4 试剂材料 除非另有说明 ,所用试剂均为分析纯 ,水为G B/T6 6 8 2规定的一级水 。 4.1 甲醇:高效液相色谱级 。 4.2 乙腈:高效液相色谱级 。 4.3 乙酸:高效液相色谱级 。 4.4 乙酸铵 4.5 5 0%甲醇水溶液 (5+5,V/V) :量取5 0 0mL 甲醇和5 0 0mL 水,混匀。 4.6 9 5%乙腈水溶液 :取5 0mL水与9 5 0mL 乙腈混匀 。 4.7 5%乙酸溶液 :取5mL乙酸溶于 9 5mL水中。 4.8 5%氨水甲醇 :取5mL氨水溶于 9 5mL甲醇中。 4.9 酸性甲醇提取液 :9 9 0mL5 0% 甲醇水溶液 (4. 5)中加1 0mL乙酸混匀 。 4.1 0 5mm o l/L乙酸铵溶液 :称取0. 3 8 5g乙酸铵溶于 10 0 0mL 水中。 4.1 1 标准物质 :三聚氰胺 (M e l a m i n e ,CA S号:1 0 8  7 8  1 ) 、三聚氰胺同位素内标 (1 5 N 3  M e l a m i n e ,CA S号:2 8 7 4 7 6  1 1  3 ) ,纯度均大于 9 8%。 4.1 2 标准储备液 :准确称取三聚氰胺标准品 0. 1g(精确到0. 0 0 01 g) ,用5 0%甲醇水溶液 (4. 5)充分溶解,稀释定容于 1 0 0mL 容量瓶中 ,配制成浓度为 1. 0 0mg/mL的标准储备溶液 ,将三聚氰胺同位素内标标准品 1mg,用5 0%甲醇水溶液 (4. 5)充分溶解 ,稀释定容于 1 0mL 容量瓶中 ,配制成浓度为 1犛 犖/犜5 1 1 8—2 0 1 9 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.0. 1 0 0m g/mL的标准储备溶液 ,分别将定容后的标准储备液倒入棕色试剂瓶中 ,-1 8℃以下避光保存 。 4.1 3 标准中间储备液 :准确移取 1 0 0μL三聚氰胺标准储备液 (4. 1 2)和1 0 0μL三聚氰胺内标标准储备液(4. 1 2)于两个1 0 0mL 容量瓶中 ,用乙腈稀释定容 ,分别配成 1. 0 0μg/mL的三聚氰胺标准溶液和 0. 1 0 0μg/mL三聚氰胺同位素内标标准溶液 ,该溶液置于棕色试剂瓶中 ,-1 8℃以下避光保存 。 4.1 4 标准工作液 :根据需要用 9 5%乙腈水溶液 (4. 6)将标准中间储备液 (4. 1 3)稀释成合适浓度的混合标准工作曲线溶液 ,参考线性浓度范围为 5ng/mL~1 0 0ng/mL,三聚氰胺同位素内标浓度为 2ng/mL临用时现配 。 4.1 5 MC X固相萃取柱 (6 0mg,3mL)1)或相当者 :使用前依次用 3mL甲醇、3mL水和3mL5% 乙酸溶液(4. 7)活化。 4.1 6 微孔滤膜 :有机系,0. 2 2μm。 5 仪器与设备 5.1 液相色谱 质谱/质谱仪:配电喷雾离子源 (E S I) 。 5.2 天平:感量为0. 0 0 01 g和0. 0 1mg。 5.3 离心机:转速不低于 80 0 0r/m i n。 5.4 旋涡混匀器 。 5.5 超声清洗器 。 5.6 固相萃取装置 。 5.7 氮吹仪。 6 试样制备与保存 6.1 试样采集制备 6.1.1 饲料:按照G B/T1 4 6 9 9. 1 采集代表性样品 ,按照G B/T2 0 1 9 5 制备。 6.1.2 血液:动物血液用肝素钠抗凝采血管收集 ,采集数量不得少于 1 0mL,密封,并表明标记 。 6.1.3 尿液:用洁净的离心管收集 ,采集数量不得少于 1 0mL,充分搅拌均匀后 ,密封,并标明标记 。 6.2 试样保存 饲料样品常温保存 ,待检血液和尿液试样于 4℃保存,留存血液和尿液试样于 -1 8℃冷冻保存 。 7 分析步骤 7.1 提取 称取2g(精确到0. 0 1g)试样于5 0mL离心管中 ,分别加入 4 0μL的三聚氰胺同位素内标溶液 (4. 1 3,相当于三聚氰胺同位素内标质量为 4ng)和2 0mL酸性甲醇提取液 (4. 9)旋涡混匀 2m i n,超声提取1 0m i n,以80 0 0r/m i n1 0℃ 冷冻离心 5m i n,取上清液 1 0mL转移至1 5mL试管中,待净化。 1) MC X固相萃取柱为 Wa t e r s公司生产 ,给出这一条信息是为了给本标准使用者提供方便 ,而不是标准管理部门 对这一产品的认可 。 2犛 犖/犜5 1 1 8—2 0 1 9 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.7.2 净化 将待净化液转移至活化后的 MC X固相萃取柱 (4. 1 5)中,流速不能超过 1滴/s,用3mL水润洗装 样液的离心管并过柱 ,再用3mL甲醇(4. 1)淋洗小柱 ,最后用3mL5% 氨水甲醇溶液 (4. 8)洗脱,收集洗脱液,于4 0℃下氮气吹干 ,用1. 0mL9 5% 乙腈水溶液 (4. 6)充分溶解残渣 ,过0. 2 2μm滤膜(4. 1 6)后,供液相色谱 质谱/质谱仪测定和确证 。 7.3 测定和确证 7.3.1 液相色谱 质谱/质谱参考条件 7.3.1.1 液相色谱参考条件 参考条件如下 : a) 色谱柱:H I L I C柱,1 0 0mm×2. 1mm (内径) ,3μm,或相当者 。 b) 流动相:B:5mm o l/L乙酸铵溶液 (4. 1 0) :A:乙腈(4. 2) ,梯度洗脱程序见表 1。 c) 流速:0. 4mL/m i n。 c) 柱温:4 0℃。 d) 进样量:5μL。 表1 流动相及梯度洗脱程序 时间(m i n) 流速(mL/m i n) 5mm o l/L乙酸铵溶液 (A)% 乙腈(B)% 0 0. 4 5 9 5 1 0. 4 5 9 5 4 0. 4 4 0 6 0 6 0. 4 4 0 6 0 6. 1 0. 4 5 9 5 1 0 0. 4 5 9 5 7.3.1.2 质谱参考条件 参考条件如下 : a) 离子源:电喷雾离子源 (E S I) : b) 扫描方式 :正离子; c) 监测方式 :多反应监测 (MRM) ; d) 雾化气(G S l) 、气帘气(CUR) 、辅助气(G S 2) 、碰撞气(CAD)均为高纯氮气或其他合适气体 ;使用前应设置各气体流量 、离子源温度以及电喷雾电压到合适值 ,使质谱灵敏度达到检测要求 ,详细条件参见附录 A; e) 去簇电压 (D P) 、碰撞室入口电压 (E P) 、碰撞电压 (C E) 、碰撞室出口电压 (C X P)应优化至最佳条件,监测离子和定量离子等详细信息条件参见附录 A。 7.3.2 定量测定 根据试样中待测物的含量情况 ,配制响应值适宜的标准工作液进行色谱分析 ,标准曲线工作液应有 5个浓度水平 ,应包括零点 。标准工作液和待测液中三聚氰胺的响应值应在仪器线性响应范围内 。如 3犛 犖/犜5 1 1 8—2 0 1 9 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.果样品中待测物含量超过标准曲线的线性范围 ,用9 5%乙腈水溶液 (4. 6)稀释至合适浓度后分析 。在上述色谱条件下三聚氰胺保留时间为 2. 8 0m i n

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