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书书书犐 犆 犛1 1.0 2 0犆6 2 中华人民共和国出入境检验检疫行业标准 犛 犖/犜5 1 0 7—2 0 1 9 出入境口岸蚊媒传染病多种病原体基因悬浮芯片检测方法 犃犿 狌 犾 狋 犻狆犾 犲 狓犾 犻狇狌 犻 犱犫 犲 犪 犱犪 狉 狉 犪 狔犳 狅 狉犱 犲 狋 犲 犮 狋 犻 狀 犵犿 狅 狊狇狌 犻 狋 狅  犫 狅 狉 狀 犲犱 犻 狊 犲 犪 狊 犲 狊狅 犳犿 狌 犾 狋 犻 狆犾 犲 狓狆犪 狋 犺 狅犵犲 狀 狊犪 狋犲 狀 狋 狉 狔 犲 狓 犻 狋狆狅 狉 狋 狊 2 0 1 90 90 3发布 2 0 2 00 30 1实施 中华人民共和国海关总署 发 布 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.书书书前  言   本标准按照 G B/T1. 1—2 0 0 9给出的规则起草 。本标准由中华人民共和国海关总署提出并归口 。本标准起草单位 :中华人民共和国石家庄海关 。本标准主要起草人 :李云、史玲莉、闫冀焕、沈军、李薇、兰景、付晓昀。 Ⅰ犛 犖/犜5 1 0 7—2 0 1 9 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.出入境口岸蚊媒传染病多种病原体基因悬浮芯片检测方法 1 范围 本标准规定了用于出入境口岸快速筛查黄热病毒 、基孔肯雅病毒 、西尼罗病毒 、日本脑炎病毒 、登革病毒(Ⅰ~Ⅳ型) 、疟原虫(间日疟原虫 、恶性疟原虫 、三日疟原虫 、卵形疟原虫 )6种口岸重点关注的蚊媒病原体的基因悬浮芯片筛查方法 。本标准适用于国境口岸入出境人员或蚊类携带以上六种病原体的筛查 。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的 。凡是注日期的引用文件 ,仅注日期的版本适用于本文 件。凡是不注日期的引用文件 ,其最新版本 (包括所有的修改单 )适用于本文件 。 G B1 9 4 8 9  实验室 生物安全通用要求 S N/T 2 7 8 8 医学媒介生物样品保存与运送要求 WS2 3 3 微生物和生物医学实验室生物安全通用准则 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件 。 3.1 蚊媒传染病  犕 狅 狊狇狌 犻 狋 狅  犫 狅 狉 狀 犲犱 犻 狊 犲 犪 狊 犲 狊是由病媒蚊子传播的自然疫源性疾病 ,常见的有日本脑炎 、疟疾、登革热、丝虫病、黄热病等危害性 较强的传染病 。 3.2 基因悬浮芯片  犵犲 狀 犲狊 狌 狊狆犲 狀 狊 犻 狅 狀犪 狉 狉 犪 狔利用带编码的微球体作为载体 ,流式细胞仪作为检测平台 ,对核酸进行大规模测定的一种生物芯片 技术。 4 生物安全防护要求 4.1 实验室应遵循 G B 1 9 4 8 9 和WS 2 3 3对生物安全 Ⅱ级(B S L  2)实验室的生物安全要求 。 4.2 使用过的实验用品应遵照 G B 1 9 4 8 9 的要求,对废弃物应进行无害化处理 。 5 对象 5.1 出入境口岸截获的来自蚊媒传染病流行国家或地区人员的可疑病例样本 。 5.2 出入境口岸截获来自蚊媒传染病流行国家或地区的蚊类样本 。 1犛 犖/犜5 1 0 7—2 0 1 9 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.6 样本的采集 、保存和运送 6.1 样本采集 6.1.1 采集来自于疫区的人员 、出入境可疑人员 、申请检验人员的血液 。 6.1.2 采集来自疫区的藏匿于交通工具 、运输设备中的蚊类或以其他方式藏匿的蚊类样本 。 6.2 样本的送检和处理 6.2.1 蚊类样本 :将采集的蚊类直接放入 -2 0℃冰箱冻死后 ,取出,分类编号 ,按3 0只一份,装入2m l螺口塑料管内 ,于-7 0℃运输或保存待检 。 6.2.2 血清和血浆 :用无菌注射器直接吸取至无菌离心管中处理 ,编号备用 。 7 主要设备与试剂 7.1 主要设备 悬浮芯片系统 、荧光显微镜 、水平电泳仪 、凝胶成像系统 、离心机、P C R仪、生物安全柜 、移液器、核 酸蛋白检测仪 、真空泵、涡流振荡仪 。 7.2 主要试剂 MEM和H a n k’s液、标本处理液 (见附录A中A. 1) 、P C R反应液(见附录A中A. 2) 、氯化四甲铵 (TMAC) 、1. 5× TMAC 杂交液(见附录A中A. 3) 、1×TMAC 杂交液(见附录A中A. 4) 、羧基化编码微球(B i o R a d 公司) 、2[N 吗啉]乙磺酸(ME S) (pH4. 5) 、1 (3 二甲氨基丙基 ) 3 乙基碳二亚胺盐酸盐(E D C) 、S D S、N 十二烷基肌氨酸钠 、T E(pH8. 0) (见附录A中A. 5) 、链亲和素 藻红蛋白 (S A  P E) 、乙二胺四乙酸 (E DTA) 、7 5%乙醇、T r i z o l、三氯甲烷 、吐温 2 0、随机引物 、AMV逆转录试剂盒 、2 0%螯合树脂C h e l e x1 0 0 。 8 检测方法 8.1 犇 犖 犃提取 8.1.1 从血样本中提取疟原虫 DNA的方法 8.1.1.1 取2 0μL全血放入 1. 5mL 离心管内 。 8.1.1.2 加2 0 0μL预热的5%C h e l e x1 0 0 ,1 0 0℃加热1 0m i n,期间振荡 3次~5次。 8.1.1.3 1 20 0 0g离心3m i n,取上清液至一干净的 0. 5mL 离心管中 ,4℃或-2 0℃保存备用 。 8.1.2 从蚊类样本中提取疟原虫 犇 犖 犃的方法 8.1.2.1 将待检蚊类样本在组织研磨器中研磨或电动匀浆机中匀浆 2 0s~3 0s,使样品匀浆成糊状 , 1 20 0 0g离心3m i n,取上清液作为样品 。 8.1.2.2 加入1 5 0μL重蒸水和 5 0μL的2 0%C h e l e x1 0 0 ,9 5℃加热1 0m i n,以提取DNA。 8.1.2.3 在加热过程中 ,每2m i n涡旋一次 。 8.1.2.4 1 20 0 0g离心此混合物 3m i n,取上清液至一干净的 0. 5mL 离心管中 ,4℃或-2 0℃ 保存备用。 2犛 犖/犜5 1 0 7—2 0 1 9 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.8.2 犚 犖 犃提取 8.2.1 将待检蚊类样本从 -7 0℃容器中取出 ,在冰上操作 ,倒入研磨器中 ,加入H a n k’s液1mL吹洗,弃去液体后加入 1 mL标本处理液 ,反复研磨至组织碎片基本消失 ,随后将研磨液吸入 1. 5 mLep pe n d o r f离心管,配平后置预冷 4℃的离心机上 ,2 00 0 0g离心1 0m i n。取上清液进行核酸提取 ,剩余的蚊标本研磨液需保存在 -7 0℃冰箱以备复查 。 8.2.2 取灭菌的 1. 5mL 离心管加入 1mL裂解液T r i z o l,然后分别加入 8. 2. 1处理后的被检样本 3 0 0μL,再加入2 0 0μL三氯甲烷 ,充分振荡均匀 (如使用旋涡振荡器 ,避免振荡过于强烈产生乳化层 ) 。在4℃条件下,1 20 0 0g离心1 5m i n。 8.2.3 将上步离心后样品的上清液 5 0 0μL转移至新的 1. 5mL 灭菌的离心管 ,加入4 0 0μL预冷的异丙醇,避免吸到中间层 ,盖紧瓶盖 ,颠倒混均 。-2 0℃冰箱静置 3 0m i n。 8.2.4 1 20 0 0g离心1 5m i n,轻轻倒去上清液 ,每管加入 5 0 0μL7 5%乙醇,颠倒洗涤 。 8.2.5 1 20 0 0g离心1 0m i n,轻轻倒去上清液 ,吸去残余液体 ,室温下干燥 5m i n。 8.2.6 将抽提的 RNA溶解在2 0μLD E P C 水中待用 。 8.3 犘 犆 犚扩增 8.3.1 逆转录合成 犮 犇 犖 犃 以随机引物作为逆转录引物 ,选择商品化逆转录试剂盒 ,按试剂说明书操作 ,以病毒RNA为模板合成c DNA。 8.3.2 多重犘 犆 犚扩增 8.3.2.1 多重P C R扩增引物的选择 :扩增引物设计方法见附录 B表B. 1,以随机引物合成的 c DNA为模板。 8.3.2.2 西尼罗病毒 P C R反应体系见表 1。 表1 体系成分 用量(μL) 1 0×P C RB u f f e r 2μL d NT P(2. 5mm o L /L) 2μL go l dT aq酶(5U/μL) 0. 0 7μL WNV  F(5μM) 0. 3μL WNV  R (5μM) 1. 5μL 样本反转录产物 c DNA 1μL d d H 2O 1 3. 1 3μL 终体积 2 0μL   P C R反应程序 :9 4℃5m i n ;9 4℃3 0 、5 6℃3 0s 、7 2℃3 0s ,进行4 0个循环;7 2℃1 0m i n ;1 0℃保温。 8.3.2.3 黄热病毒 、登革病毒 Ⅰ型、登革病毒 Ⅳ型多重P C R反应体系见表 2。 3犛 犖/犜5 1 0 7—2 0 1 9 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.表2 体系成分 用量(μL) 1 0×P C RB u f f e r 2μL d NT P(2. 5mm o L /L) 2μL go l dT aq酶(5U/μL) 0. 0 7μL Y F V  F(5μM) 0. 3μL Y F V  R(5μM) 1. 5μL D ENVⅠ F(5μM) 0. 3μL

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