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书书书  中华人民共和国出入境检验检疫行业标准 犛 犖/犜4 8 7 7.9—2 0 1 7 基因条形码筛查方法第9部分:检疫性腥黑粉菌 犇 犖 犃犫 犪 狉 犮 狅 犱 犻 狀 犵狊 犮 狉 犲 犲 狀 犻 狀犵犿 犲 狋 犺 狅 犱—犘 犪 狉 狋9:犙狌 犪 狉 犪 狀 狋 犻 狀 犲犜 犻 犾 犾 犲 狋 犻 犪 2 0 1 70 82 9发布 2 0 1 80 40 1实施 中 华 人 民 共 和 国 国家质量监督检验检疫总局发 布 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.书书书前  言   S N/T4 8 7 7《基因条形码筛查方法 》分为1 0个部分: — — —第1部分:检疫性棒形杆菌 ; — — —第2部分:检疫性黄单胞菌 ; — — —第3部分:检疫性植原体 ; — — —第4部分:检疫性茎点霉 ; — — —第5部分:检疫性拟茎点霉 ; — — —第6部分:检疫性嗜酸菌 ; — — —第7部分:检疫性轮枝菌 ; — — —第8部分:检疫性炭疽菌 ; — — —第9部分:检疫性腥黑粉菌 ; — — —第1 0部分:检疫性疫霉 。本部分为 S N/T4 8 7 7的第9部分。本部分按照 G B/T1. 1—2 0 0 9给出的规则起草 。请注意本文件的某些内容可能涉及专利 。本文件的发布机构不承担识别这些专利的责任 。本部分由国家认证认可监督管理委员会提出并归口 。本部分起草单位 :中华人民共和国深圳出入境检验检疫局 、深圳市检验检疫科学研究院 。本部分主要起草人 :程颖慧、章桂明、王颖、高瑞芳、汪莹、潘广、向才玉、冯建军、史亚千、王红英、谢晓露。 Ⅰ犛 犖/犜4 8 7 7.9—2 0 1 7 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.基因条形码筛查方法第9部分:检疫性腥黑粉菌 1 范围 S N/T4 8 7 7的本部分规定了小麦印度腥黑穗病菌 犜 犻 犾 犾 犲 狋 犻 犪犻 狀 犱 犻 犮 犪 和小麦矮化腥黑穗病菌 犜 犻 犾 犾 犲 狋 犻 犪犮 狅 狀 狋 狉 狅 狏 犲 狉 狊 犪 的DNA条形码筛查中序列的扩增 、分析及结果判定等 。本部分适用于小麦印度腥黑穗病菌和小麦矮化腥黑穗病菌的筛查 。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的 。凡是注日期的引用文件 ,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件 ,其最新版本 (包括所有的修改单 )适用于本文件 。 G B/T1 8 0 8 5  植物检疫  小麦矮化腥黑穗病菌检疫鉴定方法 G B/T2 8 0 8 0  小麦印度腥黑穗病菌检疫鉴定方法 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件 。 3.1犇 犖 犃条形码 犇 犖 犃犫 犪 狉 犮 狅 犱 犲生物体内能够代表该物种的 ,标准的、有足够变异的 、易扩增且相对较短的 DNA片段。 3.2内部间隔转录区序列  犻 狀 狋 犲 狉 狀 犪 犾 狋 狉 犪 狀 狊 犮 狉 犻 犫 犲 犱狊 狆犪 犮 犲 狉;犐 犜 犛在真核生物中 ,核糖体DNA是由核糖体基因及与之相邻的间隔区组成 ,其基因组序列从 5’到3’依次为:外部转录间隔区 、1 8S基因、内部转录间隔区 1(I T S 1) 、5. 8S基因、内部转录间隔区 2(I T S 2) 、 2 8S基因和基因间隔序列 。内转录间隔区是存在于 1 8 Sr DNA 、5. 8Sr DNA 和2 8Sr DNA 之间的区域,I T S 1和I T S 2作为非编码区 ,受外界环境因素的影响较小 ,与编码区域相比具有进化速度快的特点 ,在种内的不同菌株之间高度保守 ,而在真菌种间存在极大的变化 ,表现出极大的序列多态性 ,能够提供详尽的系统学分析所需的可遗传性状 。 4 检疫性腥黑粉菌的基本信息 英文名:Q u a r a n t i n eB u n t学名:T i l l e t i a犻 狀 犱 犻 犮 犪中文名:小麦印度腥黑穗病菌学名:犜 犻 犾 犾 犲 狋 犻 犪犮 狅 狀 狋 狉 狅 狏 犲 狉 狊 犪中文名:小麦矮化腥黑穗病菌分类学地位 :真菌界(F u ngi) 、担子菌门 (B a s i d i o m yc o t a) 、黑粉菌纲 (U s t o myc e t e s) 、黑粉菌目 (U s t i l agi n a l e s) 、腥黑粉菌科 (T i l l e t i a c e a e ) 、腥黑粉菌属 (犜 犻 犾 犾 犲 狋 犻 犪 ) 1犛 犖/犜4 8 7 7.9—2 0 1 7 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.5 方法原理 利用I T S片段作为检疫性病菌的条形码基因 ,通过对检测对象的 DNA进行P C R扩增及产物测序后,利用生物条形码数据 (BOL D)或中国检疫性有害生物 DNA条形码数据库比对 ,根据序列相似度筛查物种。 6 仪器设备和试剂 6.1 仪器设备 超净工作台 、摇床、烘箱、高压灭菌锅 、-2 0℃ 低温冰箱 、P C R扩增仪、冷冻离心机 、核酸蛋白分析仪、琼脂糖电泳仪 、凝胶成像系统 、纯水器。 6.2 试剂 氯仿、异戊醇、异丙醇、醋酸钠、甲酰胺、7 0%乙醇、无水乙醇 、T r i s饱和酚、犜 犪狇DNA聚合酶、明胶、溴化乙锭 、DNA片段标记物 、DNA裂解液、P C R缓冲液、电泳缓冲液 、上样缓冲液 、d NT P s(d AT P、 d GT P、d C T P、d TT P) 、全基因组扩增试剂盒 。 7 筛查鉴定方法 7.1 犇 犖 犃制备 DNA制备方法见附录 A。 7.2 犇 犖 犃条形码基因片段扩增 利用通用引物进行 I T S片段序列扩增 ,具体步骤见附录 B。 7.3 序列分析 测序结果利用序列拼接软件进行拼接编辑 ,比对峰图 ,判断序列方向 ,去除测序引物序列 ,去除两段测序质量 Q值小于2 0的序列,然后在生物条形码数据 (BOL D)数据库或中国检疫性有害生物 DNA条形码数据库中比对分析 。 8 结果判定 I T S序列长度约为 6 0 0bp。如果测定的序列与美国国家生物技术信息中心 (NC B I)数据库中比对 (AF 3 9 9 8 9 0. 1 ,序列参见附录 C)相似度大于 9 9%时,可初步判定为小麦印度腥黑穗病菌 ,进一步鉴定按照标准G B/T2 8 0 8 0 进行;如果测定的序列与条码数据库中 (AF 3 9 8 4 4 9. 1 ,序列参见附录 C)比对相似度大于9 9%时,可初步判定为小麦矮化腥黑穗病菌 ,进一步鉴定按照标准 G B/T1 8 0 8 5 进行。 9 菌种或标本保存 9.1 样品保存 分离到的检疫性腥黑粉菌菌种 ,转入马铃薯葡萄糖琼脂 (P DA)试管斜面培养基上 ,置于4℃黑暗 2犛 犖/犜4 8 7 7.9—2 0 1 7 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.条件下保存至少 1 2个月,以备复验 、谈判和仲裁 。获取的菌瘿或菌瘿碎片等标本 ,密封保存 ,保存至少 1 2个月,以备复验 、谈判和仲裁 。 9.2 结果记录与资料保存 完整的实验记录包括 :样品的来源 、种类、时间,实验的时间 、地点、方法和结果等 ,并要有实验人员和审核人员签字 。P C R凝胶电泳检测需有电泳结果照片 ,序列需要保存电子文件 。 3犛 犖/犜4 8 7 7.9—2 0 1 7 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.附 录 犃(规范性附录 ) 犇 犖 犃制备 犃.1 单个孢子 犇 犖 犃获取 菌瘿中冬孢子获取方法 :用针刺破菌瘿 ,挑取不带植物组织的少许孢子 ,将这些孢子轻轻展布于载玻片上,在低倍镜下观察孢子是否分散开 ,再将单个孢子挑起 ,直接转移到 P C R管的管盖中 ,在低倍镜下确认孢子是否已被成功放置 。孢子悬浮液中冬孢子获取方法 :用显微操作系统 (或在倒置显微镜下人工操作 )从孢子悬浮液中吸取孢子,所用毛细管孔径为 1 0 0μm,整个操作过程在检测器上进行监控 ,也可在显微镜下直接进行观察,确认孢子已被吸入毛细管内并被转移到 P C R管的管盖内 。用破壁针对放置在 P C R管盖中的孢子实施破壁 :在1 0×低倍镜下用破壁针头轻轻挤压孢子 ,促使孢子壁破裂 ,使孢子中的核酸释放出来 ,在显微镜下检测孢子壁是否已经被压破 。快速将P C R反应混合液加到 P C R管盖中,振荡混匀 ,然后离心 ,置于冰上 ,振荡后离心 。用全基因组扩增试剂盒对单个孢子 DNA进行扩增 ,扩增产物作为原始 DNA。 犃.2 孢子培养物 犇 犖 犃提取 犃.2.1 孢子萌发 挑取冬孢子 ,置于2%水琼脂培养基上 ,1 8℃~2 0℃、每日连续光照 1 2h条件下培养 1 0d,解剖镜下检查萌发情况 。对萌发的孢子用接种针挑取置于 P DA培养基上 ,2 0℃~2 2℃培养2 0d。 犃.2.2 孢子培养物的核酸制备 称取0. 1g培养物,放在无菌的多层滤纸上 ,吸去水分 ,置于无菌的研钵中 ,用液氮冷冻 ,用研磨棒将它们研成粉末 。立即转移到 2mL的离心管中 ,加入6 5℃预热的DNA裂解液(S D S)提取液7 0 0μL,置于水浴锅中 6 5℃水浴3 0m i n,期间不断混匀 。加入5μL1 0mg/mLRNA 酶,充分混匀 ,在3 7℃放置3 0m i n。加入等体积的 T r i s饱和酚,充分摇匀 ,在1 20

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