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书书书犐 犆 犛6 5.0 2 0.0 1犅1 6 中华人民共和国出入境检验检疫行业标准 犛 犖/犜4 8 7 7.1 5—2 0 1 9 基因条形码筛查方法第1 5部分:检疫性叶点霉 犇 犖 犃犫 犪 狉 犮 狅 犱 犻 狀 犵狊 犮 狉 犲 犲 狀 犻 狀犵犿 犲 狋 犺 狅 犱—犘 犪 狉 狋1 5:犙狌 犪 狉 犪 狀 狋 犻 狀 犲 犘 犺狔犾 犾 狅 狊 狋 犻 犮 狋 犪 狊狆 狆. 2 0 1 90 90 3发布 2 0 2 00 30 1实施 中华人民共和国海关总署 发 布 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.书书书前  言   本部分依据 G B/T1. 1—2 0 0 9给出的规则起草 。 本部分由中华人民共和国海关总署提出并归口 。本部分起草单位 :宁波检验检疫科学技术研究院 、中华人民共和国宁波海关 、中国科学院微生物研究所、中国检验检疫科学研究院 。本部分主要起草人 :段维军、蔡磊、郭立新、陈倩、段丽君、李雪莲、刘芳、赵文军、陈先锋。 Ⅰ犛 犖/犜4 8 7 7.1 5—2 0 1 9SN/T 4877《 基因条形码筛查方法 》分 为15个部分: ——第1部分:检疫性棒形杆菌; ——第2部分:检疫性黄单胞菌; ——第3部分:检疫性植原体; ——第4部分:检疫性茎点霉; ——第5部分:检疫性拟茎点霉; ——第6部分:检疫性嗜酸菌; ——第7部分:检疫性轮枝菌; ——第8部分:检疫性炭疽菌; ——第9部分:检疫性腥黑粉菌; ——第10部分:检疫性疫霉; ——第11部分:检疫性异株苋亚属; ——第12部分:黄瓜绿斑驳花叶病毒 ; ——第13部分:检疫性马铃薯Y病毒属病毒; ——第14部分:检疫性南方菜豆花叶病毒属病毒; ——第15部分:检疫性叶点霉。 本部分为 SN/T 4877的第 15部 分。 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.基因条形码筛查方法第1 5部分:检疫性叶点霉 1 范围 本部分规定了检疫性叶点霉 DNA条形码筛查方法 。本部分适用于进境植物及其产品中检疫性叶点霉的筛查 。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的 。凡是注日期的引用文件 ,仅注日期的版本适用于本文 件。凡是不注日期的引用文件 ,其最新版本 (包括所有的修改单 )适用于本文件 。 S N/T2 5 8 9 植物病原真菌检测规范 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件 。 3.1 检疫性叶点霉属真菌 葡萄苦腐病菌 犌 狉 犲 犲 狀 犲 狉 犻 犪狌 狏 犻 犮 狅 犾 犪 (B e r k. e tM. A. C u r t i s )P u n i t h a l i n ga m(现用名为 犘 犺狔犾 犾 狅 狊 狋 犻 犮 狋 犪犪 犿  狆犲 犾 犻 犮 犻 犱 犪(E nge l m.)A a,曾用名犌 狌 犻犵狀 犪 狉 犱 犻 犪犫 犻 犱 狑 犲 犾 犾 犻 犻 (E l l i s)V i a l a& R a v a z 和犘 犺 狅 犿 犪狌 狏 犻 犮 狅 犾 犪 B e r k. &M. A. C u r t i s ) 。分类地位 :叶点霉属 (犘 犺狔犾 犾 狅 狊 狋 犻 犮 狋 犪 ) 、球壳孢科 (P hyl l o s t i c t a c e a e ) 、葡萄座腔菌目 (B o t ryo sph a e r i a l e s ) 、座囊菌纲 (D o t h i d e o m yc e t e s) 、子囊菌门 (A s c o myc o t a) 。 3.2 凭证标本 (犞 狅 狌 犮 犺 犲 狉狊 狆犲 犮 犻 犿 犲 狀) 凭证标本是一种为鉴定或研究提供实物依据并具有足够存档信息 (采集及鉴定信息等 )而长期保存 的标本,它可以是完整的生物个体或其一部分 ,也可以是生物体的遗传物质 。凭证标本的保存需要有详细的标本编号 、存放地点等详细信息 ,以便于日后查证 。 3.3 犇 犖 犃条形码(犇 犖 犃犫 犪 狉 犮 狅 犱 犲 ) DNA条形码是指生物体内能够代表该物种的 ,标准的、有足够变异的 、易扩增且相对较短的 DNA片段。研究人员用 DNA条形码技术鉴定物种及物种间亲缘关系 ,修改已有的分类学结论等 。用于鉴定检疫性叶点霉属的 DNA条形码如下 :核糖体基因转录间隔区 (I n t e r n a lT r a n s c r i b e dS pa c e r,简称I T S) 4 方法原理 根据叶点霉属真菌的核糖体转录间隔区 (I T S)的序列特征 ,应用DNA条形码技术对检疫性叶点霉 进行种类筛查 ,确定目标真菌是否为检疫性叶点霉及其种属归类 。 1犛 犖/犜4 8 7 7.1 5—2 0 1 9 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.5 仪器用具和试剂 5.1 仪器设备与用具 显微镜、高压灭菌锅 、超净工作台 、组织破碎仪 、恒温水浴锅 、台式冷冻离心机 、微量分光光度仪 、电子天平、超纯水仪 、漩涡振荡器 、冰箱、微量移液器 (0. 5μL,2. 5μL,1 0μL,2 0μL,2 0 0μL,10 0 0μL) 、常规P C R仪、核酸电泳仪 、凝胶成像系统 、DNA提取仪。 5.2 主要试剂 购置如下试剂或者相应的真菌基因组提取试剂盒 :乙二胺四乙酸钠盐 (N a2E DTA·2H2O) 、氢氧 化钠(N a OH) 、T r i s碱、浓盐酸(HC l) 、溴化十六烷基三甲铵 (C TA B) 、氯化钠(N a C l) 、聚乙烯吡咯烷酮 (P V P) 、冰醋酸(CH3COOH) 、蒸馏水、氯仿(CHC l 3) 、异戊醇、7 0%乙醇。 P C R和电泳检测所需试剂 :1 0×P C R 缓冲液、脱氧核糖核苷三磷酸 (d NT P s) 、E x T aq聚合酶、引物、超纯水、D L2 0 0 0M a r k e r 、琼脂糖、G e l R e d 核酸凝胶染料 。 6 筛查鉴定方法 6.1 样品的采集与处理 样品的采集 、分离、纯化和培养参照 S N/T2 5 8 9植物病原真菌检疫鉴定方法进行 。 6.2 核酸的制备 采用基因组提取试剂盒制备 DNA,或采用改良的 C TA B提取法,参见附录 A。 6.3 犇 犖 犃纯度与浓度的测定 用微量紫外分光光度计测定 DNA的纯度与浓度 ,分别取得 2 6 0n m 和2 8 0n m 处的吸收值 ,计算核酸的纯度和浓度 ,计算公式如下 : DNA纯度=OD 2 6 0 /OD 2 8 0DNA浓度=5 0×OD 2 6 0 μg/mLP C R级DNA溶液的OD 2 6 0/OD 2 8 0比值应为 1. 7~1. 9。 6.4 序列扩增测序 利用通用引物对 I T S基因进行扩增测序 (具体步骤见附录 B) ,将序列在 G e n b a n k 数据库或中国检疫性有害生物 DNA条形码数据库中进行比对 ,若与数据库中叶点霉属 I T S基因序列相似性均大于 9 8%,则比对分析序列同源性 。 7 结果判定 I T S基因序列长度大于 5 0 0bp,在NC B I数据库或中国检疫性有害生物 DNA条形码数据库中进行比对分析 ,若与数据库中叶点霉属 I T S基因序列 (参见附录 C)同源性大于 9 8%,则判定该菌为叶点霉属。若测定序列与附录 D检疫性叶点霉 I T S参考序列同源性为 1 0 0%,则判定该菌为葡萄苦腐病菌 。 2犛 犖/犜4 8 7 7.1 5—2 0 1 9 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.8 保存 8.1 样品保存 分离并最终鉴定为检疫性目标真菌的菌株应转接到试管斜面上 ,经登记和经手人签字后置于 4℃低温冰箱中保存 ,定期(3 0d~6 0d)转接,必要时冻干后长期保存 。 8.2 结果记录与资料保存 完整的实验记录包括 :样品的来源 、种类、时间,实验的时间 、地点、方法和结果等 ,并要有实验人员和审核人员签字 。P C R凝胶电泳检测需有电泳结果照片 ,序列需要保存电子文件 。 3犛 犖/犜4 8 7 7.1 5—2 0 1 9 rHgCb@g · ykbûR60u5[PO –0SÑU.附 录 犃(资料性附录 ) 犇 犖 犃提取方法 犃.1 取适量菌丝体 (5 0 0mg)和灭菌的玻璃珠放在 2mL离心管中 ,加入5 0 0μL2×C TA B (6 0℃) ,置于组织破碎仪上破碎组织细胞壁 ,水浴保温 3 0~6 0m i n,偶尔震荡混匀 ; 犃.2 加入5 0 0μL(1∶1,等体积)氯仿/异戊醇(2 4∶1) ,混合均匀后 (3m i n) ,1 20 0 0r pm,离心1 5m i n; 犃.3 提取上清液 ,加入2 5 0μL(1∶1,等体积)氯仿/异戊醇(2 4∶1) ,1 20 0 0r pm,离心1 5m i n;重复此步骤一次 ; 犃.4 提取上清液 ,加入等体积异丙醇 ,混匀,沉淀3 0m i n; 犃.5 出现沉淀后 ,1 20 0 0r pm离心1 0m i n; 犃.6 弃去液相 ,加入4 0 0μL7 0%乙醇,震荡洗涤 ,再1 20 0 0r pm离心5m i n;重复此步骤一次 ; 犃.7 弃去液相 ,超净工作台中干燥 DNA,约2 0m i n; 犃.8 加入5 0或1 0 0μL双蒸水(视情况而定 )溶解DNA样品,将样

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